По Материалам V Всероссийской научной конференции
с международным участием
«Водоросли: проблемы таксономии, экологии
и использование в мониторинге»,
посвященной памяти Веры Ивановны Есыревой (Нижний Новгород)


Биохимический состав Cylindrotheca closterium (Ehrenb.) Rayman net Levin как источник биологически активных веществ при накопительном режиме культивирования 

The biochemical composition of Cylindrotheca closterium (Ehrenb.) Rayman net Levin, as a source of biologically active substances in cumulative cultivation

 

Железнова С.Н., Геворгиз Р.Г.

Svetlana N. Zheleznova, Ruslan G. Gevorgiz


ФИЦ «Институт биологии южных морей имени А.О.Ковалевского РАН»
(Севастополь, Россия)

 

УДК 582.261.1:551.464.6

 

В данной работе были исследованы биохимические характеристики диатомовой водоросли Cylindrotheca closterium в накопительном режиме культивирования в разных фазах роста. По нашим данным в экспоненциальной фазе роста биомасса C. closterium характеризуется минимальным содержанием липидов – 3% от сухой биомассы и максимальным содержанием углеводов – 23% от сухой массы. При переходе культуры C. closterium в стационарную фазу роста наблюдается достаточно высокое накопление суммарных липидов – до 28% сухой массы, при этом содержание углеводов снижается до 7%. В конце стационарной фазы (21-ые сутки культивирования) содержание жирных кислот составляет 50% от общих липидов или 12,5% от сухой массы. Была зафиксирована определенная зависимость между концентрациями фукоксантина, суммарными липидами и полиненасыщенными жирными кислотами (ПНЖК) в биомассе диатомовой водоросли C. сlosterium. Во время активного роста в экспоненциальной фазе концентрация фукоксантина составляла 0,5–1 мг.г-1 сухой массы. При переходе культуры в стационарную фазу роста концентрация фукоксантина достигла 7±0,2 мг∙г-1 сухой биомассы. В конце стационарной фазы концентрация фукоксантина достигала своего максимального значения 20 мг∙г-1 сухого веса.

Ключевые слова: диатомовая водоросль Cylindrotheca closterium; липиды; белки; углеводы; ПНЖК; накопительный режим культивирования

 


Ценным сырьем для получения различных биологически активных веществ (БАВ) являются морские диатомовые водоросли, которые содержат в себе высокие концентрации фукоксантина (10–25 мг·г-1 сухой массы) (Wang et al., 2018) и полиненасыщенных омега-3 жирных кислот (5–6% от сухой массы) (Abdo et al., 2015; Demirel et al., 2015). Фукоксантин (Фк) проявляет противоопухолевую, антиоксидантную и иммуномодулирующую активность (Hosokawa et al., 2010; Chung et al., 2013; Neumann et al., 2019). Полиненасыщенные жирные кислоты (ПНЖК) снижают риск развития сердечно-сосудистых заболеваний и атеросклероза, играют исключительно важную роль в формировании нервной системы и зрительного аппарата ребенка в течение первых лет жизни (Гладышев, 2012).

Среди всех диатомовых водорослей особый интерес представляет бентосная диатомовая водоросль Cylindrotheca сlosterium, в составе ее фотосинтетического аппарата содержание фукоксантина достигает до 78% общего количества каротиноидов (Peng et al., 2011), что составляет 2,6% сухой массы (Wang et al., 2018), а содержание ПНЖК достигает 5–6% от сухой массы (Pereira et al., 2012; Li et al., 2014). Данная водоросль отличается от других бентосных диатомей высокой продуктивностью и высокой удельной скоростью роста (Железнова, 2019), а также довольно высокими скоростями синтеза фукоксантина и ПНЖК. Бентосная диатомовая водоросль C. сlosterium содержит большое количество кремния (3%), за счет чего C. сlosterium легко оседает на дно при отсутствии перемешивания, что позволяет сконцентрировать суспензию в 20 и более раз в течение 1–2 часов без затрат энергии, делая данный исследуемый объект удобным при культивировании в промышленных масштабах (Геворгиз и др., 2016).

На практике при получении биомассы диатомовых водорослей и ценных веществ на их основе наиболее распространенным является метод накопительного культивирования (Serrazanetti et al., 2006; Suman et al., 2012; Wang et al., 2015, 2018). Кроме того, исследование продукционных и биохимических характеристик C. сlosterium в накопительном режиме культивирования является необходимым для организации проточного культивирования.

Цель данной работы: исследовать биохимические характеристики диатомовой водоросли Cylindrotheca closterium (Ehrenb.) Reimann et Lewin в накопительной культуре.

 

Материалы и методы

В работе использовали культуру диатомовой водоросли Cylindrotheca closterium (Ehrenb.) Reimann et Lewin из коллекции культур ИнБЮМ РАН. Культуру выращивали на питательной среде RS (Железнова и др., 2015), при расчете биогенных элементов на 3 грамма сухой массы водоросли (концентрации всех биогенных элементов в питательной среде RS увеличены в 3 раза), при постоянной температуре суспензии 20±1С, в режиме накопительного культивирования  в  фотобиореакторах  плоскопараллельного  типа с рабочим объемом 2 л,  слоем  5 см, при круглосуточном освещении люминесцентными лампами CE-PIL-1-LF 46W/54-765. Средняя облученность рабочей поверхности фотобиореактора составляла 150 мкмоль квантов·м–2·с–1 (33 Вт·м–2).. В процессе выращивания культуру барботировали воздухом (1,2 л воздуха на 1 л культуры в мин.) посредством компрессорной установки. Плотность культуры в начале накопительного культивирования составляла 0,1–0,2 г сухого вещества на 1 л. Параллельно при тех же условиях культуру выращивали в промышленной газовихревой системе культивирования. Рабочий объем суспензии в газовихревом фотобиореакторе составлял 580 л, рабочий слой – 0,08 м, освещаемая поверхность – 7,3 кв.м. В качестве источника освещения использовались лампы ДРЛ-700, которые давали среднюю освещенность на поверхности культуры 7,1 клк (≈30 Вт·кв.м-1). Эксперименты проводили при оптимальной рН=8–9 (Геворгиз и др., 2016). На протяжении всего эксперимента культура C. сlosterium непрерывно перемешивалась за счет создания вихревых потоков воздуха посредством вращения активатора с частотой 20 Гц (1200 об·мин-1). Затраты энергии на перемешивание составляли примерно 0,06 Вт·л-1 суспензии (Геворгиз и др. 2016).

Плотность культуры определяли двумя методами: 1) методом йодатной окисляемости (Геворгиз и др., 2015) и 2) прямым взвешиванием сырой массы C. сlosterium в полипропиленовых пробирках на аналитических весах с погрешностью 0,1 мг после осаждения клеток центрифугированием (1600 g в течение 2 мин). Для пересчета полученных данных на сухую массу использовали коэффициент связи между сухой и сырой массой (k=0,1).

Массовую долю белка в биомассе водорослей определяли по методу Лоури в модификации (Геворгиз, 2017) с использованием человеческого альбумина (MERCK) в качестве стандарта для построения калибровочного графика. Для определения доли белка отбирали аликвоту объемом 1–2 мл, при этом навеска сырой биомассы не превышала 0,1 г. При необходимости суспензию разбавляли морской водой.

Содержание общих липидов в биомассе определяли колориметрическим методом с фосфованилиновым реактивом (Руководство..., 2004). Для определения содержания липидов из биореактора отбирали аликвоту объемом 1–2 мл; при этом навеска сырой биомассы не превышала 0,2–0,3 г. Липиды из навески сырой биомассы C. сlosterium экстрагировали смесью Фолча. Экстракцию проводили многократно до полного обесцвечивания биомассы.

Углеводы в биомассе C. сlosterium определяли по методу Дюбуа (Dubois et al., 1956) в собственной модификации. Для определения содержания углеводов из биореактора отбирали аликвоту объемом 1 мл, при необходимости разбавляли в 2–3 раза морской водой. Далее центрифугировали в течение 1–2 мин при 3000 об·мин-1 и надосадочную жидкость удаляли; при этом навеска не должна превышать 0,1 г сырой массы.

Содержание фукоксантина определяли методом тонкослойной хроматографии со стандартом кристаллического Фк (Рябушко и др., 2017).

Жирнокислотный состав суммарных липидов культуры C. closterium анализировали методом газовой хромато-масс-спектрометрии (Suman et al., 2012). Для получения метиловых эфиров жирных кислот (МЭЖК) из биомассы микроводоросли C. closterium использовали методику (Kates, 1972). Определяли метиловые эфиры жирных кислот (МЭЖК) на газохроматографическом комплексе «Кристалл 5000.2» с пламенно-ионизационным детектором (ПИД). Разделение проводили на капиллярной колонке BPX5 фирмы «SGE Analytical Science» длиной 60 м, с внутренним диаметром 0,25 мм и с толщиной неподвижной фазы 0,25 мкм в НОЦКП «Спектрометрия и хроматография» ФГБУН ИМБИ РАН. Газохроматографическое разделение МЭЖК проводили в температурном интервале от 40°С до 280°С в режиме программирования температуры: 1) 1 мин при 40°С; 2) подъем до 220°С со скоростью 10°C/мин (6 мин); 3) подъем до 280°С со скоростью 10°С/мин (10 мин); 4) 20 мин при 280°С, общее время анализа – 45 мин. Газ–носитель – гелий, скорость потока – 1,5 мл·мин-1, ввод пробы – 1 мкл пробы без деления потока, температура испарителя – 250°С. Диапазон сканирования масс составил 50–450 m/z. Качественный анализ МЭЖК проведен путем анализа хроматограмм с использованием стандартного образца смеси МЭЖК (SUPELKO 37 component FAME mix. CRM47885). Расчет содержания эфиров жирных кислот проводился по методу процентной нормализации по площадям пиков (Kates, 1972).

 

Результаты и обсуждение

При накопительном культивировании концентрация массовой доли суммарных липидов и углеводов в биомассе C. closterium изменяется в широких пределах в зависимости от фазы роста. По нашим данным в экспоненциальной фазе роста биомасса C. closterium характеризуется минимальным содержанием липидов – 3% от сухой массы и максимальным содержанием углеводов – 23% от сухой массы. При переходе культуры C. closterium в стационарную фазу роста, как у представителей диатомовых водорослей, наблюдается достаточно высокое накопление суммарных липидов – до 28% сухой массы, при этом содержание углеводов снижается до 7% (табл. 1). Высокая концентрация липидов и снижение содержания углеводов в стационарной фазе роста обусловлена снижением облученности на единицу биомассы, а также лимитированием биогенными элементами (Li et al., 2014).

Таблица 1. Биохимический состав диатомовой водоросли C. closterium при накопительном культивировании

Table 1. The biochemical composition of the diatom C. closterium during cumulative cultivation

 

Необходимо отметить, что содержание массовой доли суммарных белков у вида C. closterium в зависимости от фазы роста изменяется незначительно – от 33% до 40% сухой массы. Поэтому C. closterium используют в аквакультуре (Brown et al., 1995).

Культура C. closterium характеризуется средними для бентосных диатомей показателями содержания золы – 30–35% от абсолютно сухого веса в различных фазах роста (табл. 1). Следовательно, исследуемый штамм C. closterium по сравнению с другими видами микроводорослей имеет достаточно небольшую калорийность – 342 ккал на 100 г сухой биомассы, так как на органическое вещество приходится 65–70% сухой массы.

По нашим данным, доля жирных кислот (ЖК) от общего содержания липидов в пересчете на сухую биомассу возрастает на протяжении всей стационарной фазы роста. В условиях экспоненциального роста на четвертые сутки эксперимента доля ЖК составляет 41% от общих липидов или 1,7% от сухой массы, в начале стационарной фазы роста (7 сутки культивирования) доля ЖК достигает 42% от общих липидов или 7,14% от сухой массы и в конце стационарной фазы (21 сутки культивирования) содержание жирных кислот составляет 50% от общих липидов или 12,5% от сухой массы. Также по нашим данным для штамма C. closterium характерно преобладание полярных липидов в стационарной фазе роста, на долю ПНЖК может приходиться 50% от суммы жирных кислот. Поэтому диатомовая водоросль C. сlosterium может служить перспективным и быстро возобновляемым источником незаменимых полиненасыщенных жирных кислот (ПНЖК) для человека и имеет ряд преимуществ по сравнению с другими источниками ПНЖК (морской рыбой и другими морскими гидробионтами), которые в последнее время в полной мере не обеспечивают всевозрастающую потребность населения в ПНЖК.

Из литературы известно, что основными преобладающими кислотами для диатомовых водорослей, и для C. closterium в частности, являются: пальмитиновая (20% от суммы ЖК), пальмитолеиновая кислота (30–40% от суммы ЖК), эйкозопентаеновая (10–25% от ЖК) и арахидоновая кислоты (8–10% от ЖК). В нашей работе рассматривается содержание только данных кислот.

Из табл. 2 видно, что максимальное содержание пальмитолеиновой кислоты наблюдается в экспоненциальной фазе роста (39% от суммы ЖК), при достижении культурой стационарной фазы концентрация данной кислоты снижается и составляет 29,7% от ЖК. Это можно объяснить тем, что данная кислота находится в начале цепочки биосинтеза длинноцепочечных жирных кислот (Li et al., 2014). Ценность пальмитолеиновой кислоты заключается в проявлениии высокой биологическую активность относительно грамположительных бактерий.

 

Таблица 2. Содержание основных жирных кислот диатомовой водоросли C. closterium
в разных фазах роста

Table 2. The content of basic fatty acids of diatom C. closterium in different phases of growth

По нашим данным диатомовая водоросль C. closterium содержит высокие концентрации эйкозапентаеновой (16–20%) и арахидоновой (7–13%) кислот во всех фазах роста, что имеет большое прикладное значение, т.к. эйкозапентаеновая кислота обладает профилактическим действием против сердечно-сосудистых заболеваний (Гладышев, 2012; Manerba et al., 2010), а арахидоновая кислота служит предшественником гормоноподобных веществ, известных как эйкозаноиды (простагландины, тромбоксаны, лейкотриены и др.) (Abdo et al., 2015). При этом содержание эйкозапентаеновой кислоты возрастает в экспоненциальной фазе роста и достигает максимума в стационарной фазе роста (20% от суммы ЖК или 11,89 мг·г-1сухой массы). Максимальная концентрация арахидоновой кислоты (13% от суммы ЖК или 9,5 мг·г-1сухой массы) зафиксирована в конце стационарной фазы роста.

Ранее авторами наблюдалась определенная зависимость между концентрацией фукоксантина, суммарными липидами и ПНЖК в биомассе диатомовой водоросли Cylindrotheca closterium (Железнова и др., 2018). Во время активного роста в экспоненциальной фазе концентрация фукоксантина составляла 0,5–1 мг·г-1 сухой массы. При переходе культуры в стационарную фазу роста концентрация фукоксантина достигла 7±0,2 мг·г-1 сухой биомассы, в основном за счет увеличения биомассы культуры, а также за счет синтеза фукоксантина в клетках во время фазы замедления роста. В течение всей стационарной фазы роста зафиксировано постоянное увеличение содержания фукоксантина в биомассе C. closterium, и в конце стационарной фазы концентрация фукоксантина достигала своего максимального значения 20 мг∙г-1 сухого веса. Активные процессы биосинтеза фукоксантина в стационарной фазе C. closterium обусловлены низкими значениями концентраций питательных веществ в среде в стационарной фазе роста, а также низкой освещенностью, поскольку при недостатке освещенности более востребована светособирающая функция и синтез ксантофиллов замещается синтезом фукоксантина.

В газовихревой системе культивирования за 4 суток культура выходит в стационарную фазу роста и достигает своей максимальной биомассы 3 г∙л-1, при этом отмечено, что концентрация фукоксантина составляет 5 мг∙г-1 сухой массы, липидов – 6,4% от сухой массы и ПНЖК – 3% от сухой массы. Следовательно, средняя скорость биосинтеза фукоксантина и липидов в газовихревой системе составляет 1,25 мг и 16 мг в сутки соответственно.

 

Заключение

Показана возможность получения интенсивной культуры бентосной диатомовой водоросли Cylindrotheca closterium с высоким содержанием ПНЖК и фукоксантина в промышленных масштабах.

Зафиксировано преобладание ω3 полиненасыщенных жирных кислот в биомассе C. closterium. Выявлено, что только в конце стационарной фазы роста биомасса диатомовой водоросли C. closterium характеризуется максимальной концентраций липидов – 28% от сухой массы, максимальной концентрацией жирных кислот и максимальным содержанием фукоксантина – 20 мг∙г-1 сухого веса.

 

Работа выполнена в рамках госзадания ФИЦ ИнБЮМ по теме «Исследование механизмов управления продукционными процессами в биотехнологических комплексах с целью разработки научных основ получения биологически активных веществ и технических продуктов морского генезиса» (№ гос. регистрации АААА-А18-118021350003-6).

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов, требующего раскрытия в данном сообщении.

 

 

Список литературы

  1. Геворгиз Р.Г., Железнова С.Н., Зозуля Ю.В., Уваров И.П., Репков А.П., Лелеков А.С. Промышленная технология производства биомассы морской диатомеи Cylindrotheca closterium (Ehrenberg) Reimann & Lewin с использованием газовихревого фотобиореактора // Актуальные вопросы биологической физики и химии. 2016. № 1–1. С. 73–77. http://elibrary.ru/item.asp?id=26426168
  2. Геворгиз Р.Г., Железнова С.Н., Нехорошев М.В. Количественное определение массовой доли суммарных белков в воздушно-сухой биомассе микроводорослей методом Лоури: учебно-методическое пособие. – Севастополь: ФБГУН ИМБИ, 2017. – 43 с.
  3. Геворгиз Р.Г., Железнова С.Н., Никонова Л.Л., Бобко Н.И., Нехорошев М.В. Оценка плотности культуры фототрофных микроорганизмов методом йодатной окисляемости. – Севастополь: ФБГУН ИМБИ, 2015. – 31 с. http://repository.marine-research.org/handle/299011/43
  4. Гладышев М.И. Незаменимые полиненасыщенные жирные кислоты и их пищевые источники для человека // Journal of Siberian Federal University. Biology. 2012. V. 5, iss.4. P. 352–386. http://elib.sfu-kras.ru/handle/2311/9554
  5. Железнова С.Н. Продукционные характеристики морской дитатомовой водоросли Cylindrotheca closterium (Ehrenb.) Reimann et Lewin в интенсивной культуре при различных источниках азота в питательной среде // Морской биологический журнал. 2019. V4, iss.1. P. 33–44. DOI – https://doi.org/10.21072/mbj.2019.04.1.04
  6. Железнова С.Н., Геворгиз Р.Г., Бобко Н.И, Лелеков А.С. Питательная среда для интенсивной культуры диатомовой водоросли Cylindrotheca closterium (Ehrenb.) Reimann et Lewin – перспективного объекта биотехнологий // Актуальная биотехнология. 2015. Т.14, № 3. C. 46–48.
  7. Железнова С.Н., Геворгиз Р.Г., Малахов А.С. Взаимосвязь концентраций фукоксантина и общих липидов в биомассе диатомовой водоросли Cylindrotheca closterium (Ehrenberg) Reimann et Lewin // Актуальные вопросы биологической физики и химии (БФФХ – 2019): сб. материалов XIV Международной научной конференции, посвященной 60-летию кафедры биофизики физического факультета МГУ им. М.В. Ломоносова (Москва, 21 – 24 ноября 2018 г.). – Москва, 2018. – Т.3, №3. – С. 472–475.
  8. Руководство по современным биохимическим методам исследования водных экосистем, перспективных для промысла и марикультуры / Под ред. А.И. Агатовой. – Москва: ВНИРО, 2004. – 123 с.
  9. Рябушко В.И., Железнова С.Н., Нехорошев М.В. Влияние азота на накопление фукоксантина диатомовой водорослью Cylindrotheca closterium (Ehrenb.) Reimann et Lewin // Аlgologia. 2017. Т27, № 1. С. 15–21.
  10. Abdo S.M., Ali G.H., El-Baz F.K. Potential production of omega fatty acids from microalgae // International Journal of Pharmaceutical Sciences Review and Research. 2015. V.34, iss.2. P. 210–215. DOI – https://doi.org/10.12777/ijse.2.1.13-16
  11. Brown M.R., Jeffrey S.W. The amino acid and gross composition of marine diatoms potentially useful for mariculture // Journal of Applied Phycology. 1995. V.7, iss.6. P. 521–527. DOI –https://doi.org/10.1007/BF00003938
  12. Chung T.W., Choi H.J., Lee J.Y., Jeong H.S., Kim C.H., Joo M., Choi J.Y., Han C.W., Kim S.Y., Choi J.S., Ha K.T. Marine algal fucoxanthin inhibits the metastatic potential of cancer cells // Biochemical and Biophysical Research Communications. 2013. V.439, №4. P. 580–585. DOI – https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2013.09.019
  13. Demirel Z., Imamoglu E., Conk Dalay M. Fatty acid profile and lipid content of Cylindrotheca closterium cultivated in air-lift photobioreactor // Journal of Chemical Technology & Biotechnology. 2015. V.90, iss.12. P. 2290–2296. DOI – https://doi.org/10.1002/jctb.4687
  14. Dubois M., Gilles K.A., Hamilton Y.K., Reber P.A., Smith F. Colometric method for determination of sugars and related substances // Analytical Chemistry. 1956. V.28, iss.3. P. 350–356. DOI –https://doi.org/10.1021/ac60111a017
  15. Hosokawa M., Miyashita T., Nishikawa S., Emi S., Tsukui T., Beppu F., Okada T., Miyashita K. Fucoxanthin regulates adipocytokine mRNA expression in white adipose tissue of diabetic/obese KK-Ay mice // Archives of Biochemistry and Biophysics. 2010. V.504. P. 17–25. DOI – https://doi.org/10.1016/j.abb.2010.05.031
  16. Kates M. Techniques of lipidology. Isolation, analysis and identification of lipids. – Amsterdam, London, American Elsevier Publishing Co., New York, 1972. 322 p.
  17. Li H.-Y., Lu Y., Zheng J.-W., Yang W.-D., Liu J.-S. Biochemical and genetic engineering of diatoms for polyunsaturated fatty acid biosynthesis // Marine Drugs. 2014. V.12, iss.1. P. 153–166. DOI –https://doi.org/10.3390/md12010153
  18. Manerba A., Vizzardi E., Metra M., Dei Cas L. N-3 PUFAs and cardiovascular disease prevention // Future Cardiology. 2010. V.6, iss.3. P. 343–350. DOI –https://doi.org/10.2217/fca.10.19
  19. Mitani E., Nakayama F., Matsuwaki I., Ichi I., Kawabata A., Kawachi M., Kato M. Fatty acid composition profiles of 235 strains of three microalgal divisions within the NIES microbial culture collection // Microbial Resources and  Systematics. 2017. V.33, iss.1. P. 19–29.
  20. Neumann U., Derwenskus F., Flaiz Flister V., Schmid-Staiger U., Hirth T., Bischoff S.C. Fucoxanthin, a carotenoid derived from Phaeodactylum tricornutum exerts antiproliferative and antioxidant activities in vitro // Antioxidants. 2019. V8, iss. 6. P. 183–194. DOI – https://doi.org/10.3390/antiox8060183
  21. Peng J., Yuan J.-P., Wu C.-F., Wang J.-H. Fucoxanthin, a marine carotenoid present in brown seaweeds and diatoms: metabolism and bioactivities relevant to human health // Marine Drugs. 2011. V.9, iss.10. P. 1806–1828. DOI – https://doi.org/10.3390/md9101806
  22. Pereira H., Barreira L., Figueiredo F., Custódio L., Vizetto-Duarte C., Polo C., Rešek E., Engelen A., Varela J. Polyunsaturated fatty acids of marine macroalgae: potential for nutritional and pharmaceutical applications // Marine Drugs. 2012. V.10, iss.9. P. 1920–1935. DOI – https://doi.org/10.3390/md10091920
  23. Serrazanetti G.P., Folicaldi A., Guerrini F., Monti G., Pistocchi R., Boni L. Microalgal lipid markers for paleoclimatic research // Climate Research. 2006. V31, iss. 2–3. P. 145–150. DOI – https://doi.org/10.3354/cr031145
  24. Suman K., Kiran T., Devi U.K., Sarma N.S. Culture medium optimization and lipid of Cylindrotheca, a lipid – and polyunsaturated fatty acid – rich pennate diatom and potential source of eicosapentaenoic acid // Botanica Marina. 2012. V.55, iss.3. P.  289–299. DOI – https://doi.org/10.1515/bot-2011-0076
  25. Wang S., Verma S.K., Said I.H., Thomsen L., Ullrich M.S., Kuhnert N. Changes in the fucoxanthin production and protein profiles in Cylindrotheca closterium in response to blue light-emitting diode light // Microbial Cell Factories. 2018bd. V.17, iss.110. P. 1–13. DOI – https://doi.org/10.1186/s12934-018-0957-0
  26. Wang S., Zhang L., Yang G., Zhu B., Pan K. Purification of a diatom and its identification to Cylindrotheca closterium. Journal of Ocean University of China. 2015. V.14. P. 357–361. DOI –https://doi.org/10.1007/s11802-015-2404-8

Статья поступила в редакцию 30.06.2020
После доработки 16.08.2021
Статья принята к публикации 30.08.2021

 

Об авторах

Железнова Светлана Николаевна – Svetlana N. Zheleznova

младший научный сотрудник, ФИЦ «Институт биологии южных морей имени А.О.Ковалевского РАН» - ФИЦ ИнБЮМ РАН, Севастополь, Россия (Kovalevsky Institute of Biology of the Southern Seas of RAS, Sevastopol, Russia), Отдел биотехнологий и фиторесурсов

zheleznovasveta@yandex.ru

Геворгиз Руслан Георгиевич – Ruslan G. Gevorgiz

кандидат биологических наук
старший научный сотрудник, ФИЦ «Институт биологии южных морей имени А.О.Ковалевского РАН» - ФИЦ ИнБЮМ РАН, Севастополь, Россия (Kovalevsky Institute of Biology of the Southern Seas of RAS, Sevastopol, Russia), Отдел биотехнологий и фиторесурсов

r.gevorgiz@yandex.ru

Корреспондентский адрес: Россия, 299011, г. Севастополь, пр. Нахимова, 2, ФИЦ ИнБЮМ РАН; тел. +7 (869) 255-07-95.

 

ССЫЛКА:

Железнова С.Н., Геворгиз Р.Г. Биохимический состав Cylindrotheca closterium (Ehrenb.) Rayman net Levin как источник биологически активных веществ при накопительном режиме культивирования. 2021. №1 (25). С. 1–9. URL: http://algology.ru/1683

DOI – https://doi.org/10.33624/2311-0147-2021-1(25)-1-9


При перепечатке ссылка на сайт обязательна

Уважаемые коллеги! Если Вы хотите получить версию статьи в формате PDF, пожалуйста, напишите в редакцию, и мы ее вам с удовольствием пришлем бесплатно. 
Адрес - info@algology.ru

 

 

The biochemical composition of  Cylindrotheca closterium (Ehrenb.) Rayman net Levin, as a source of biologically active substances in cumulative cultivation

Svetlana N. Zheleznova, Ruslan G. Gevorgiz

Kovalevsky Institute of Biology of the Southern Seas of RAS (Sevastopol, Russia)

In this work, we studied the biochemical characteristics of the diatom Cylindrotheca closterium in the cumulative mode of cultivation in different phases of growth. According to our data, in the exponential growth phase, C. closterium biomass is characterized by a minimum lipid content of 3% of dry biomass and a maximum carbohydrates content of 23% of dry weight. During the transition of C. closterium culture to the stationary growth phase, as in the case of a representative of diatoms, a rather high accumulation of total lipids is observed – to 28% dry weight, while the carbohydrates content decreases to 7%. At the end of the stationary phase (21st day of cultivation), the content of fatty acids is 50% of total lipids or 12.5% of dry weight. A certain relationship between the concentrations of fucoxanthin, total lipids and polyunsaturated fatty acids (PUFA) in the biomass of C. сlosterium diatom was recorded. During active growth in the exponential phase, the concentration of fucoxanthin was 0.5–1 mg∙g-1 dry weight. During the tranition of the culture to the stationary phase of growth, the concentration of fucoxanthin reached 7±0.2 mg∙g-1 dry biomass. At the end of the stationary phase, the concentration of fucoxanthin reached its maximum value of 20 mg∙g-1 dry weight.

Key words: diatom Cylindrotheca closterium; lipids; proteins; carbohydrates; PUFA; cumulative cultivation mode

 

References

  1. Abdo S.M., Ali G.H., El-Baz F.K. Potential production of omega fatty acids from microalgae. International Journal of Pharmaceutical Sciences Review and Research. 2015. V.34, iss.2. P. 210–215. DOI – https://doi.org/10.12777/ijse.2.1.13-16
  2. Brown M.R., Jeffrey S.W. The amino acid and gross composition of marine diatoms potentially useful for mariculture. Journal of Applied Phycology. 1995. V.7, iss.6. P. 521–527. DOI –https://doi.org/10.1007/BF00003938
  3. Chung T.W., Choi H.J., Lee J.Y., Jeong H.S., Kim C.H., Joo M., Choi J.Y., Han C.W., Kim S.Y., Choi J.S., Ha K.T. Marine algal fucoxanthin inhibits the metastatic potential of cancer cells. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2013. V.439, №4. P. 580–585. DOI – https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2013.09.019
  4. Demirel Z., Imamoglu E., Conk Dalay M. Fatty acid profile and lipid content of Cylindrotheca closterium cultivated in air-lift photobioreactor. Journal of Chemical Technology & Biotechnology. 2015. V.90, iss.12. P. 2290 – 2296. DOI – https://doi.org/10.1002/jctb.4687
  5. Dubois M., Gilles K.A., Hamilton Y.K., Reber P.A., Smith F. Colometric method for determination of sugars and related substances. Analytical Chemistry. 1956. V.28, iss.3. P. 350–356. DOI –https://doi.org/10.1021/ac60111a017
  6. Gevorgiz R.G., Zheleznova S.N., Nekhoroshev M.V. Kolichestvennoye opredeleniye massovoy doli obshchego belka v vozdushno-sukhom biomasse mikrovodorosley metodom Louri: uchebno-metodicheskoye posobiye [Quantitative determination of the mass fraction of total proteins in air-dry biomass of microalgae by the Lowry method]. Sevastopol, 2017. 43 p. Kovalevsky Institute of Marine Biological Research of RAS. (in Russ.)
  7. Gevorgiz R. G., Zheleznova S. N., Nikonova L. L., Bobko N. I., Nekhoroshev M. V. Otsenka plotnosti kul’tury fototrofnykh mikroorganizmov metodom iodatnoi okislyaemosti [Evaluation of the density of the culture of phototrophic microorganisms by the method of iodate oxidizability]. Sevastopol, 2015. 31 p. Kovalevsky Institute of Marine Biological Research of RAS). (in Russ.) https://repository.marine-research.org/handle/299011/43
  8. Gevorgiz R.G., Zheleznova S.N., Zozulya Yu.V., Uvarov I.P., Repkov A.P., Lelekov A.S. Promyshlennaya tekhnologiya proizvodstva biomassy morskoj diatomei Cylindrotheca closterium (Ehrenberg) Reimann & Lewin s ispol'zovaniem gazovihrevogo fotobioreaktora [Industrial production technology biomass marine diatoms Cylindrotheca closterium (Ehrenberg) Reimann & Lewin using gas vortex photobioreactor]. Aktual’nyye voprosy biologicheskoy fiziki i khimii. 2016. №. 1–1. P. 73–77. (in Russ.)  http://elibrary.ru/item.asp?id=26426168
  9. Gladyshev M.I. Nezamenimyye polinenasyshchennyye zhirnyye kisloty i ikh pishchevyye istochniki dlya cheloveka [Essential polyunsaturated fatty acids and their food sources for humans]. Zhurnal Sibirskogo federal'nogo universiteta. Biologiya. 2012. V.5, iss.4. P. 352–386. (in Russ.). http://elib.sfu-kras.ru/handle/2311/9554
  10. Hosokawa M., Miyashita T., Nishikawa S., Emi S., Tsukui T., Beppu F., Okada T., Miyashita K. Fucoxanthin regulates adipocytokine mRNA expression in white adipose tissue of diabetic/obese KK-Ay mice. Archives of Biochemistry and Biophysics. 2010. V.504. P. 17–25. DOI –https://doi.org/10.1016/j.abb.2010.05.031
  11. Kates M. Techniques of lipidology. Isolation, analysis and identification of lipids. American Elsevier Publishing Co., Amsterdam, London, New York, 1972. 322 p.
  12. Li H.-Y., Lu Y., Zheng J.-W., Yang W.-D., Liu J.-S. Biochemical and genetic engineering of diatoms for polyunsaturated fatty acid biosynthesis. Marine Drugs. 2014. V.12, iss.1. P. 153–166. DOI –https://doi.org 10.3390/md12010153
  13. Manerba A., Vizzardi E., Metra M., Dei Cas L. N-3 PUFAs and cardiovascular disease prevention. Future Cardiology. 2010. V.6, iss.3. P. 343–350. DOI –https://doi.org 10.2217/fca.10.19
  14. Mitani E., Nakayama F., Matsuwaki I., Ichi I., Kawabata A., Kawachi M., Kato M. Fatty acid composition profiles of 235 strains of three microalgal divisions within the NIES microbial culture collection. Microbial Resources and Systematics. 2017. V.33, iss.1. P. 19–29.
  15. Neumann U., Derwenskus F., Flaiz Flister V., Schmid-Staiger U., Hirth T., Bischoff S.C. Fucoxanthin, a carotenoid derived from Phaeodactylum tricornutum exerts antiproliferative and antioxidant activities in vitro. Antioxidants. 2019. V.8, iss.6. P. 183–194. DOI – https://doi.org 10.3390/antiox8060183
  16. Peng J., Yuan J.-P., Wu C.-F., Wang J.-H. Fucoxanthin, a marine carotenoid present in brown seaweeds and diatoms: metabolism and bioactivities relevant to human health. Marine Drugs. 2011. V.9, iss.10. P. 1806–1828. DOI – https://doi.org 10.3390/md9101806
  17. Pereira H., Barreira L., Figueiredo F., Custódio L., Vizetto-Duarte C., Polo C., Rešek E., Engelen A., Varela J. Polyunsaturated fatty acids of marine macroalgae: potential for nutritional and pharmaceutical applications. Marine Drugs. 2012. V.10, iss.9. P. 1920–1935. DOI – https://doi.org 10.3390/md10091920
  18. Rukovodstvo po sovremennoy biokhimicheskoy metodologii issledovaniy vodnykh ekosistem, perspektivnykh dlya promysla i marikul'tury [Guide to modern biochemical methods for the study of aquatic ecosystems, promising for fishing and mariculture] A.I. Agatovyy (Ed.). VNIRO, Moskow, 2004. 123 p. (in Russ.)
  19. Ryabushko V.I., Zheleznova S.N., Nekhoroshev M.V. Effect of nitrogen on the accumulation of fucoxanthin from diatom Cylindrotheca closterium (Ehrenb.) Reimann et Lewin. Algologia. 2017. V.27, N1. P. 15–21.
  20. Serrazanetti G.P., Folicaldi A., Guerrini F., Monti G., Pistocchi R., Boni L. Microalgal lipid markers for paleoclimatic research. Climate Research. 2006. V.31, iss.2–3. P. 145–150. DOI – https://doi.org 10.3354/cr031145
  21. Suman K., Kiran T., Devi U.K., Sarma N.S. Culture medium optimization and lipid of Cylindrotheca, a lipid – and polyunsaturated fatty acid – rich pennate diatom and potential source of eicosapentaenoic acid. Botanica Marina. 2012. V.55, iss.3. P. 289–299. DOI – https://doi.org 10.1515/bot-2011-0076
  22. Wang S., Verma S.K., Said I.H., Thomsen L., Ullrich M.S., Kuhnert N. Changes in the fucoxanthin production and protein profiles in Cylindrotheca closterium in response to blue light-emitting diode light. Microbial Cell Factories. 2018bd. V.17, iss.110. P. 1–13. DOI – https://doi.org/10.1186/s12934-018-0957-0
  23. Wang S., Zhang L., Yang G., Zhu B., Pan K. Purifcation of a diatom and its identifcation to Cylindrotheca closterium. Journal of Ocean University of China. 2015. V.14. P. 357–361. DOI –https://doi.org/10.1007/s11802-015-2404-8
  24. Zheleznova S.N. Production characteristics of the diatom Cylindrotheca closterium (Ehrenb.) Reimann et Lewin grown in an intensive culture at various nitrogen sources in the medium. Morskoj biologicheskij zhurnal [Marine Biological Journal]. 2019. V.4, iss.1. P. 33–44. (in Russ.) DOI –https://doi.org/10.21072/mbj.2019.04.1.04
  25. Zheleznova S.N., Gevorgiz R.G., Bobko N.I, Lelekov A.S. Pitatel'naya sreda dlya intensivnoy kul'tury diatomovoy vodorosli Cylindrotheca closterium (Ehrenb.) Reimann et Lewin – perspektivnyy ob"yekt biotekhnologiy [Nutrient medium for an intensive culture of the diatom alga Cylindrotheca closterium (Ehrenb.) Reimann et Lewin - a promising object of biotechnology]. Aktual'naya biotekhnologiya. 2015b. V.14, iss.3. P. 46–48. (in Russ.)
  26. Zheleznova S.N., Gevorgiz R.G., Malakhov A.S. Vzaimosvyaz' kontsentratsiy fukoksantina i obshchikh lipidov v biomasse diatomovoy vodorosli Cylindrotheca closterium (Ehrenberg) Reimann et Lewin [Relationship between fucoxanthin and total lipid concentrations in diatom biomass Cylindrotheca closterium (Ehrenberg) Reimann et Lewi]. Aktual'nyye voprosy biologicheskoy fiziki i khimii [Actual issues of biological physics and chemistry] (BFFC – 2019): Proceedings of XIV Intern. Sci. Conference to the 60th anniversary of the Department of Biophysics of the Physics Faculty of M.V. Lomonosov Moscow State University (Moscow, 21–24 Nov. 2018). Moscow, 2018. T.3, №3. P. 472–475.

 

Authors

Zheleznova Svetlana N.

ORCID – https://orcid.org/0000-0003-1800-5902

Kovalevsky Institute of Biology of the Southern Seas of RAS, Sevastopol, Russia

zheleznovasveta@yandex.ru

Gevorgiz Ruslan G.

ORCID – https://orcid.org/0000-0002-8017-5593

Kovalevsky Institute of Biology of the Southern Seas of RAS, Sevastopol, Russia

r.gevorgiz@yandex.ru

 

ARTICLE LINK:

Zheleznova S.N., Gevorgiz R.G. The biochemical composition of  Cylindrotheca closterium (Ehrenb.) Rayman net Levin, as a source of biologically active substances in cumulative cultivation. Voprosy sovremennoi algologii (Issues of modern algology). 2021. № 1 (25). P. 1–9. URL: http://algology.ru/1683

DOI – https://doi.org/10.33624/2311-0147-2021-1(25)-1-9

When reprinting a link to the site is required


Dear colleagues! If you want to receive the version of the article in PDF format, write to the editor, please and we send it to you with pleasure for free. 
Address - info@algology.ru

 

На ГЛАВНУЮ

Карта сайта

 

К разделу ОБЗОРЫ, СТАТЬИ И КРАТКИЕ СООБЩЕНИЯ








ГЛАВНАЯ

НОВОСТИ

О ЖУРНАЛЕ

АВТОРАМ

26 номеров журнала

ENGLISH SUMMARY

ОБЗОРЫ И СТАТЬИ

ТЕМАТИЧЕСКИЕ РАЗДЕЛЫ

УЧЕБНО-МЕТОДИЧЕСКИЕ
МАТЕРИАЛЫ


АКВАРИАЛЬНЫЕ СИСТЕМЫ
И  ИХ  СОДЕРЖАНИЕ


КОНФЕРЕНЦИИ

АЛЬГОЛОГИЧЕСКИЙ СЕМИНАР

СТУДЕНЧЕСКИЕ РАБОТЫ

АВТОРЕФЕРАТЫ

РЕЦЕНЗИИ


ПРИЛОЖЕНИЕ к журналу:


ОБЪЕКТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

ОПРЕДЕЛИТЕЛИ И МОНОГРАФИИ

ОТЕЧЕСТВЕННАЯ АЛЬГОЛОГИЯ
СЕГОДНЯ


ИСТОРИЯ АЛЬГОЛОГИИ

КЛАССИКА
ОТЕЧЕСТВЕННОЙ АЛЬГОЛОГИИ


ПУБЛИКАЦИИ ПРОШЛЫХ ЛЕТ

ВЕДУЩИЕ АЛЬГОЛОГИЧЕСКИЕ
ЦЕНТРЫ


СЕКЦИЯ  АЛЬГОЛОГИИ  МОИП

НАУЧНО-ПОПУЛЯРНЫЙ РАЗДЕЛ

СЛОВАРИ И ТЕРМИНЫ



НАШИ ПАРТНЕРЫ


ПРЕМИИ

КОНТАКТЫ



Карта сайта






Рассылки Subscribe.Ru
Журнал "Вопросы современной альгологии"
Подписаться письмом


Облако тегов:
микроводоросли    макроводоросли    пресноводные    морские    симбиотические_водоросли    почвенные    Desmidiales(отд.Сharophyta)    Chlorophyta    Rhodophyta    Conjugatophyceae(Zygnematophyceae)    Phaeophyceae    Chrysophyceae    Диатомеи     Dinophyta    Prymnesiophyta_(Haptophyta)    Cyanophyta    Charophyceae    бентос    планктон    перифитон    кокколитофориды    Экология    Систематика    Флора_и_География    Культивирование    методы_микроскопии    Химический_состав    Минеральное_питание    Ультраструктура    Загрязнение    Биоиндикация    Размножение    Морфогенез    Морфология_и_Морфометрия    Физиология    Морские_травы    Использование    ОПРЕДЕЛИТЕЛИ    Фотосинтез    Фитоценология    Антарктида    Японское_море    Черное_море    Белое_море    Баренцево_море    Карское_море    Дальний_Восток    Азовское_море    Каспийское_море    Чукотское_море    КОНФЕРЕНЦИИ    ПЕРСОНАЛИИ    Bacillariophyceae    ИСТОРИЯ    РЕЦЕНЗИЯ    Биотехнология    Динамические_модели    Экстремальные_экосистемы    Ископаемые_водоросли    Сезонные_изменения    Биоразнообразие    Аральское_море    первичная_продукция    Байкал    молекулярно-генетический_анализ    мониторинг    Хлорофилл_a    гипергалинные_водоемы    

КОНТАКТЫ

Email: info@algology.ru

Изготовление интернет сайта
5Dmedia

ЛИЦЕНЗИЯ

Эл N ФС 77-22222 от 01 ноября 2005г.

ISSN 2311-0147