№ 2 (32) 2023


по Материалам XVIII Международной научной конференции диатомологов «Диатомовые водоросли: морфология, биология, систематика, экология, флористика, палеогеография, биостратиграфия», посвящённой памяти выдающихся российских диатомологов
Н.И. Стрельниковой и Л.Я. Каган (28.08.2023 - 03.09.2023)


Роль метакаспаз в развитии и гибели клеток в лабораторной культуре диатомовой водоросли Ulnaria acus (Kützing) Aboal 

The role of metacaspases in the development and death of cells in a laboratory culture of the diatom Ulnaria acus (Kützing) Aboal

 

Байрамова Э.М., Марченков А.М., Захарова Ю.Р., Петрова Д.П.,
Бедошвили Е.Д.

Elvira M. Bayramova, Artem M. Marchenkov, Yulia R. Zakharova,
Darya P. Petrova, Yekaterina D. Bedoshvili

 

Лимнологический институт СО РАН (Иркутск, Россия)

 

УДК 577.218

 

Исследование участия метакаспаз и антиоксидантной системы на примере генов UaMC1, UaMC2, UaMC3 и альдегиддегидрогеназы и глутатионсинтетазы в разных условиях культивирования пресноводной диатомовой водоросли Ulnaria acus (Kützing) Aboal с помощью ПЦР в реальном времени показало их участие не только в процессах гибели клетки, но и экспрессию с разной активностью на протяжении интерфазы.

Ключевые слова: диатомовые водоросли; клеточная гибель; клеточный цикл; метакаспазы

 

Сталкиваясь с изменениями окружающей среды, диатомовые водоросли проявляют высокую адаптационную способность. Однако интенсивные и продолжительные изменения (например, дефицит нутриентов или изменение освещенности) приводят к гибели клеток (Bidle, 2016; Mizrachi et al., 2019). Акклиматизации и гибель клеток представляют собой сложные процессы, регулируемые на молекулярном уровне. Все больше данных появляется о том, что важными участниками в данных процессах являются метакаспазы, которые представляют собой протеазы, специфически разрезающие пептидный субстрат после аминокислот аргинина и/или лизина в процессах программируемой гибели клеток у растений и микроводорослей (Bidle and Bender, 2008; Wang et al., 2020; Graff van Creveld et al., 2021). Метакаспазы также важны и для других клеточных процессов (Nakajima and Kuranaga, 2017). Окислительный стресс, который является основной причиной гибели клеток (Lauritano et al., 2015), компенсируется работой антиоксидантной системы – альдегиддегидрогеназы и глутатионсинтетазы (ALDH и GSHS). Следует отметить, что в настоящее время недостаточно данных о работе антиоксидантной системы и метакаспаз у диатомей. Ранее, в геноме U. acus было обнаружено 8 генов метакаспаз (Morozov, 2019). Анализ предсказанных аминокислотных последовательностей показала, что необходимые для функциональной активности аминокислотные мотивы имеют только метакаспазы UaMC1, UaMC2, UaMC3, у остальных пяти они нарушены (Байрамова и др., 2021).

В качестве объекта исследования использовался аксеничный штамм BK498 пресноводной диатомовой водоросли Ulnaria acus из коллекции отдела ультраструктуры клетки ЛИН СО РАН. Клетки инкубировали при 4 °C, с освещенностью 16 мкмоль/м2/с при цикле дня/ночи 12:12, в среде DM в течении двух недель для достижения экспоненциальной фазы роста. После этого клетки разделялись на две группы – для исследования стрессового воздействия и синхронизации культуры. В качестве стрессового воздействия использовался дефицит кремния, который является лимитирующим фактором для диатомей. Для этого клетки отмывали от среды и помещали в среду DM без метасиликата натрия после чего культивировали неделю, как описано выше. Для выделения РНК биомассу собирали каждые два дня. Для синхронизации культуры клетки помещали в среду без метасиликата натрия в темноту на 24 часа. Затем добавляли метасиликат натрия до конечной концентрации 0,2 мМ и культивировали в обычных условиях. Биомассу для выделения РНК отбирали каждые 4 часа в течении 24 часов.

В данной работе анализировали экспрессию мРНК метакаспаз UaMC1, UaMC2, UaMC3, а также альдегиддегидрогеназы и глутатионсинтетазы (ALDH и GSHS) методом ПЦР в реальном времени. Анализ относительной экспрессии генов проводили с использованием метода delta delta ct. По результатам анализа RefFinder в качестве референсного гена для исследования синхронизированной культуры использовали ген 18S рРНК, а в условиях дефицита кремния – ген E2. Для выяснения значение метакаспаз на деление диатомей в среду добавляли специфический ингибитор (Z-Val-Arg-Pro-DLArg-fluoromethylketone trifluoroacetate salt, Bachem); клетки культивировали при нормальных условиях, и проводили подсчет численности клеток.

Нами было показано, что в условиях дефицита кремния клетки U. acus прекращают делиться уже через сутки. Окрашивание флуоресцентным красителем Live Cell Labeling Kit (Abcam) показало, что клетки сохраняют свою жизнеспособность в течение недели. Спустя 1 сутки возрастает уровень экспрессии UaMC1 и высокий уровень сохраняется в течение пяти дней кремниевого голодания, после чего уровень резко снижается. Уровень экспрессии UaMC2 возрастает на третьи сутки депривации кремния и постепенно снижается, однако, оставаясь выше контрольного значения. Экспрессия UaMC3 возрастает на третий день культивирования без кремния и сохраняется высокой на протяжении всего эксперимента. На седьмой день голодания по кремнию возрастает экспрессия ALDH, а экспрессия GSHS увеличивается на третьи сутки и остается постоянной до конца эксперимента. Таким образом, анализ ALDH и GSHS подтверждает процесс окислительного стресса в культуре при депривации кремния.

При воздействии ингибитора метакаспаз на клетки U. acus наблюдается угнетение деления клеток, при этом в контроле было показано, что уровень экспрессии исследуемых метакаспаз остается постоянным в течение всего эксперимента. Полученный результат может указывать на важную роль метакаспаз UaMC1, UaMC2, UaMC3 для диатомей.

Эксперимент с синхронизированной культурой показал различие в экспрессии генов метакаспаз UaMC1, UaMC2, UaMC3 в процессе морфогенеза створки и на протяжение интерфазы. Экспрессия UaMC1 и UaMC3 имеет колебательный характер. В первые часы увеличивается, падает спустя 12 часов от начала эксперимента и резко повышается через 20 часов, а затем вновь снижается до минимальных значений. Колебания уровня экспрессии UaMC2 имеют сходную, но менее выраженную динамику. Уровень экспрессии генов антиоксидантной системы защиты колеблется незначительно, однако, отмечается пик спустя 20 часов от начала эксперимента у обоих генов. Уменьшение уровня экспрессии всех исследуемых генов спустя 24 часа после возобновления деления может указывать на переход клеток непосредственно к митозу, демонстрируя известное явление транскрипционного молчания при входе в него (Palozola et al., 2017).

Таким образом, в данной работе нами исследовано участие метакаспаз и антиоксидантной системы в процессах, связанных с реакцией на дефицит кремния в среде у диатомей. На примере U. acus впервые показана активность метакаспаз в интерфазе. Полученные данные будут способствовать пониманию роли данных протеаз в клеточном цикле и в ответе на стрессовые условия.



Работа выполнена в рамках бюджетного проекта ФГБУН ЛИН СО РАН № 1210323001869.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов, требующего раскрытия в данной статье.

 

Список литературы

  1. Байрамова Э.М., Марченков А.М., Морозов А.А., Бедошвили Е.Д. Идентификация и анализ генов семейства метакаспаз у Fragilaria radians // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология, cпецвыпуск. 2021. С. 12.
  2. Bidle K.D. Programmed Cell Death in Unicellular Phytoplankton // Current Biology. 2016. V. 26. №13. P. 594-607. DOI: 10.1016/j.cub.2016.05.056
  3. Bidle K.D., Bender S.J. Iron starvation and culture age activate metacaspases and programmed cell death in the marine diatom Thalassiosira pseudonana // Eukaryotic Cell. 2008. V. 7. P. 223-236. DOI: 10.1128/EC.00296-07
  4. Graff van Creveld S., Ben-Dor S., Mizrachi A., Alcolombri U., Hopes A., Mock T., Rosenwasser S., Vardi A. Biochemical characterization of a novel redox-regulated metacaspase in a marine diatom // Frontiers in Microbiology. 2021. V. 12. DOI: 10.3389/fmicb.2021.688199
  5. Lauritano C., Orefice I., Procaccini G., Romano G., Ianora A. Key genes as stress indicators in the ubiquitous diatom Skeletonema marinoi // BMC Genomics. 2015. V. 28. №16. DOI: 10.1186/s12864-015-1574-5
  6. Mizrachi A., Graff van Creveld S., Shapiro O.H., Rosenwasser S., Vardi A. Light-dependent single-cell heterogeneity in the chloroplast redox state regulates cell fate in a marine diatom // Elife. 2019. V. 8. e47732. DOI: 10.7554/eLife.47732
  7. Morozov A.A. Duplications and subdomain shuffling in diatom metacaspases // Limnology and Freshwater Biology. 2019. V. 2. №3. DOI: 10.31951/2658-3518-2019-A-3-240
  8. Nakajima Y.I., Kuranaga E. Caspase-dependent non-apoptotic processes in development // Cell Death and Differentiation. 2017. V. 24. №8. P. 1422-1430. DOI: 10.1038/cdd.2017.36
  9. Palozola K.C., Donahue G., Liu H., Grant G.R., Becker J.S., Cote A., Yu H., Raj A., Zaret K.S. Mitotic transcription and waves of gene reactivation during mitotic exit // Science. 2017. V. 358. №6359. P. 119-122. DOI: 10.1126/science.aal4671
  10. Wang H., Chen F., Mi T., Liu Q., Yu Z., Zhen Y. Responses of marine diatom Skeletonema marinoi to nutrient deficiency: programmed cell death // Applied and Environmental Microbiology. 2020. V. 86. DOI: 10.1128/AEM.02460-19

Статья поступила в редакцию 25.06.2023
Статья принята к публикации 15.08.2023

 

Об авторах

Байрамова Эльвира МахаловнаElvira M. Bayramova

аспирант, младший научный сотрудник, Лимнологический институт СО РАН, Иркутск, Россия (Limnological Institute SB RAS, Irkutsk, Russia)

bairamovaelvria@gmail.com

Марченков Артём Михайлович – Artem M. Marchenkov

кандидат биологических наук
научный сотрудник, Лимнологический институт СО РАН, Иркутск, Россия (Limnological Institute SB RAS, Irkutsk, Russia)

marchenkov.am@gmail.com

Захарова Юлия Робертовна – Yulia R. Zakharova

кандидат биологических наук
старший научный сотрудник, Лимнологический институт СО РАН, Иркутск, Россия (Limnological Institute SB RAS, Irkutsk, Russia)

julia.zakharova@gmail.com

Петрова Дарья Петровна – Darya P. Petrova

кандидат биологических наук
старший научный сотрудник, Лимнологический институт СО РАН, Иркутск, Россия (Limnological Institute SB RAS, Irkutsk, Russia)

daryapetr@gmail.com

Бедошвили Екатерина Джамбулатовна – Yekaterina D. Bedoshvili

кандидат биологических наук
старший научный сотрудник, Лимнологический институт СО РАН, Иркутск, Россия (Limnological Institute SB RAS, Irkutsk, Russia)

bedoshvilied@list.ru

Корреспондентский адрес: Россия, 664033, Иркутск, ул. Улан-Баторская, 3, ЛИН СО РАН. Телефон: (3952) 42-00-58

 

ССЫЛКА:

Байрамова Э.М., Марченков А.М., Захарова Ю.Р., Петрова Д.П., Бедошвили Е.Д. Роль метакаспаз в развитии и гибели клеток в лабораторной культуре диатомовой водоросли Ulnaria acus (Kützing) Aboal // Вопросы современной альгологии. 2023. № 2 (32). С. 26–28. URL: http://algology.ru/2039

DOI – https://doi.org/10.33624/2311-0147-2023-2(32)-26-28

EDN – TNPHXX

 

При перепечатке ссылка на сайт обязательна

Уважаемые коллеги! Если Вы хотите получить версию статьи в формате PDF, пожалуйста, напишите в редакцию, и мы ее вам с удовольствием пришлем бесплатно. 
Адрес - info@algology.ru

 

 

The role of metacaspases in the development and death of cells in a laboratory culture of the diatom Ulnaria acus (Kützing) Aboal

Elvira M. Bayramova, Artem M. Marchenkov, Yulia R. Zakharova,
Darya P. Petrova, Yekaterina D. Bedoshvili

Limnological Institute SB RAS (Irkutsk, Russia)

The study of the participation of metacaspases and the antioxidant system on the example of the genes UaMC1, UaMC2, UaMC3, aldehyde dehydrogenase and glutathione synthetase under different conditions of cultivation of the freshwater diatom Ulnaria acus (Kützing) Aboal using real-time PCR showed their participation not only in cell death processes, but also expression with different activity during the interphase.

Key words: diatoms; cell death; cell cycle; metacaspase

 

References

  1. Bajramova E.M., Marchenkov A.M., Morozov A.A., Bedoshvili E.D. Identifikaciya i analiz genov semejstva metakaspaz u Fragilaria radians [Identification and analysis of genes of the metacaspase family in Fragilaria radians]. Molekulyarnaya genetika, mikrobiologiya i virusologiya [Molecular genetics, microbiology and virology]. 2021. P. 12. (In Russ.)
  2. Bidle K.D. Programmed Cell Death in Unicellular Phytoplankton. Current Biology. 2016. V. 26. №13. P. 594-607. DOI: 10.1016/j.cub.2016.05.056
  3. Bidle K.D., Bender S.J. Iron starvation and culture age activate metacaspases and programmed cell death in the marine diatom Thalassiosira pseudonana. Eukaryotic Cell. 2008. V. 7. P. 223-236. DOI: 10.1128/EC.00296-07
  4. Graff van Creveld S., Ben-Dor S., Mizrachi A., Alcolombri U., Hopes A., Mock T., Rosenwasser S., Vardi A. Biochemical characterization of a novel redox-regulated metacaspase in a marine diatom. Frontiers in Microbiology. 2021. V. 12. DOI: 10.3389/fmicb.2021.688199
  5. Lauritano C., Orefice I., Procaccini G., Romano G., Ianora A. Key genes as stress indicators in the ubiquitous diatom Skeletonema marinoi. BMC Genomics. 2015. V. 28. №16. DOI: 10.1186/s12864-015-1574-5
  6. Mizrachi A., Graff van Creveld S., Shapiro O.H., Rosenwasser S., Vardi A. Light-dependent single-cell heterogeneity in the chloroplast redox state regulates cell fate in a marine diatom. Elife. 2019. V. 8. e47732. DOI: 10.7554/eLife.47732
  7. Morozov A.A. Duplications and subdomain shuffling in diatom metacaspases. Limnology and Freshwater Biology. 2019. V. 2. №3. DOI: 10.31951/2658-3518-2019-A-3-240
  8. Nakajima Y.I., Kuranaga E. Caspase-dependent non-apoptotic processes in development. Cell Death and Differentiation. 2017. V. 24. №8. P. 1422-1430. DOI: 10.1038/cdd.2017.36
  9. Palozola K.C., Donahue G., Liu H., Grant G.R., Becker J.S., Cote A., Yu H., Raj A., Zaret K.S. Mitotic transcription and waves of gene reactivation during mitotic exit. Science. 2017. V. 358. №6359. P. 119-122. DOI: 10.1126/science.aal4671
  10. Wang H., Chen F., Mi T., Liu Q., Yu Z., Zhen Y. Responses of marine diatom Skeletonema marinoi to nutrient deficiency: programmed cell death. Applied and Environmental Microbiology. 2020. V. 86. DOI: 10.1128/AEM.02460-19

 

Authors

Bayramova Elvira M.

ORCID – https://orcid.org/0000-0001-7433-1580

Limnological Institute SB RAS, Irkutsk, Russia

bairamovaelvria@gmail.com

Marchenkov Artem M.

Limnological Institute SB RAS, Irkutsk, Russia

marchenkov.am@gmail.com

Zakharova Yulia R.

Limnological Institute SB RAS, Irkutsk, Russia

julia.zakharova@gmail.com

Petrova Darya P.

ORCID – https://orcid.org/0000-0002-5594-504X

Limnological Institute SB RAS, Irkutsk, Russia

daryapetr@gmail.com

Bedoshvili Yekaterina D.

ORCID – https://orcid.org/0000-0001-9620-5745

Limnological Institute SB RAS, Irkutsk, Russia

bedoshvilied@list.ru

 

ARTICLE LINK:

Bayramova E.M., Marchenkov A.M., Zakharova Yu.R., Petrova D.P., Bedoshvili Ye.D. The role of metacaspases in the development and death of cells in a laboratory culture of the diatom Ulnaria acus (Kützing) Aboal. Voprosy sovremennoi algologii (Issues of modern algology). 2023. № 2 (32). P. 26–28. URL: http://algology.ru/2030

DOI – https://doi.org/10.33624/2311-0147-2023-2(32)-26-28

EDN – TNPHXX

 

When reprinting a link to the site is required

Dear colleagues! If you want to receive the version of the article in PDF format, write to the editor, please and we send it to you with pleasure for free. 
Address - info@algology.ru

 

 

 

На ГЛАВНУЮ

Карта сайта

 

К разделу ОБЗОРЫ, СТАТЬИ И КРАТКИЕ СООБЩЕНИЯ

 

 








ГЛАВНАЯ

НОВОСТИ

О ЖУРНАЛЕ

АВТОРАМ

32 номера журнала

ENGLISH SUMMARY

ОБЗОРЫ И СТАТЬИ

ТЕМАТИЧЕСКИЕ РАЗДЕЛЫ

УЧЕБНО-МЕТОДИЧЕСКИЕ
МАТЕРИАЛЫ


АКВАРИАЛЬНЫЕ СИСТЕМЫ
И  ИХ  СОДЕРЖАНИЕ


КОНФЕРЕНЦИИ

АЛЬГОЛОГИЧЕСКИЙ СЕМИНАР

СТУДЕНЧЕСКИЕ РАБОТЫ

АВТОРЕФЕРАТЫ

РЕЦЕНЗИИ


ПРИЛОЖЕНИЕ к журналу:


ОБЪЕКТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

ОПРЕДЕЛИТЕЛИ И МОНОГРАФИИ

ОТЕЧЕСТВЕННАЯ АЛЬГОЛОГИЯ
СЕГОДНЯ


ИСТОРИЯ АЛЬГОЛОГИИ

КЛАССИКА
ОТЕЧЕСТВЕННОЙ АЛЬГОЛОГИИ


ПУБЛИКАЦИИ ПРОШЛЫХ ЛЕТ

ВЕДУЩИЕ АЛЬГОЛОГИЧЕСКИЕ
ЦЕНТРЫ


СЕКЦИЯ  АЛЬГОЛОГИИ  МОИП

НАУЧНО-ПОПУЛЯРНЫЙ РАЗДЕЛ

СЛОВАРИ И ТЕРМИНЫ



НАШИ ПАРТНЕРЫ


ПРЕМИИ

КОНТАКТЫ



Карта сайта






Рассылки Subscribe.Ru
Журнал "Вопросы современной альгологии"
Подписаться письмом


Облако тегов:
микроводоросли    макроводоросли    пресноводные    морские    симбиотические_водоросли    почвенные    Desmidiales(отд.Сharophyta)    Chlorophyta    Rhodophyta    Conjugatophyceae(Zygnematophyceae)    Phaeophyceae    Chrysophyceae    Диатомеи     Dinophyta    Prymnesiophyta_(Haptophyta)    Cyanophyta    Charophyceae    бентос    планктон    перифитон    кокколитофориды    Экология    Систематика    Флора_и_География    Культивирование    методы_микроскопии    Химический_состав    Минеральное_питание    Ультраструктура    Загрязнение    Биоиндикация    Размножение    Морфогенез    Морфология_и_Морфометрия    Физиология    Морские_травы    Использование    ОПРЕДЕЛИТЕЛИ    Фотосинтез    Фитоценология    Антарктида    Японское_море    Черное_море    Белое_море    Баренцево_море    Карское_море    Дальний_Восток    Азовское_море    Каспийское_море    Чукотское_море    КОНФЕРЕНЦИИ    ПЕРСОНАЛИИ    Bacillariophyceae    ИСТОРИЯ    РЕЦЕНЗИЯ    Биотехнология    Динамические_модели    Экстремальные_экосистемы    Ископаемые_водоросли    Сезонные_изменения    Биоразнообразие    Аральское_море    первичная_продукция    Байкал    молекулярно-генетический_анализ    мониторинг    Хлорофилл_a    гипергалинные_водоемы    сообщества_макрофитов    эвтрофикация    инвазивные_виды    

КОНТАКТЫ

Email: info@algology.ru

Изготовление интернет сайта
5Dmedia

ЛИЦЕНЗИЯ

Эл N ФС 77-22222 от 01 ноября 2005г.

ISSN 2311-0147